Füüsilised meetodid verejooksu lõplikuks peatamiseks. Ajutised ja lõplikud meetodid verejooksu peatamiseks. Verejooksu lõpliku peatamise reeglid

Verejooksu põhjustavaid põhjuseid on 3 rühma.

Rühm 1 sisaldab veresoonte seina mehaanilised kahjustused. Need vigastused võivad olla avatud, kui haavakanal tungib läbi naha välise verejooksu tekkega, või suletud (näiteks luukildudega veresoonte vigastuste tagajärjel suletud luumurdude, lihaste ja siseorganite traumaatilise rebendi tagajärjel), mis põhjustab sisemise verejooksu arengut.

Verejooksu põhjustavate põhjuste 2. rühm hõlmab veresoonte seina patoloogilised seisundid. Sellised seisundid võivad tekkida ateroskleroosi, mädase sulamise, nekroosi, spetsiifilise põletiku või kasvajaprotsessi tagajärjel. Selle tulemusena hävib vaskulaarne sein järk-järgult, mis võib lõppkokkuvõttes viia "äkki" tekkiva arrosiivse verejooksuni.

3. põhjuste rühm hõlmab vere hüübimissüsteemi erinevate osade häired(koagulopaatiline verejooks). Selliseid häireid võivad põhjustada mitte ainult pärilikud (hemofiilia) või omandatud (trombotsütopeeniline purpur, pikaajaline kollatõbi jne) haigused, vaid ka dekompenseeritud traumaatiline šokk, mis põhjustab dissemineerunud intravaskulaarse koagulatsiooni sündroomi (tarbimis-koagulopaatia) väljakujunemist.

Sõltuvalt sellest, kus veri välja valatakse, on välised verejooks, mille puhul verd valatakse väliskeskkonda (kas otse või keha loomulike avade kaudu) ja sisemine, kui veri koguneb kehaõõnsustesse, interstitsiaalsetesse ruumidesse, imbkudedesse.

Sõltuvalt esinemise ajast eristatakse primaarset ja sekundaarset verejooksu.

Esmane verejooks on põhjustatud anuma kahjustusest vigastuse ajal ja tekib kohe pärast seda.

Teisene-varane verejooks (mitu tundi kuni 2-3 päeva pärast vigastust) võib olla põhjustatud veresoonte kahjustusest või verehüüvete eraldumisest, mis on tingitud ebapiisavast immobiliseerimisest transpordi ajal, jämedast manipuleerimisest luufragmentide ümberpaigutamisel jne.

Teisene-hiljem verejooks (5-10 päeva või rohkem pärast vigastust) on reeglina veresoone seina hävimise tagajärg luufragmendi või võõrkeha (lamatise) pikaajalise surve tõttu, trombi mädane sulamine, arrosioon. või aneurüsmi rebend.

Sõltuvalt kahjustatud laevade anatoomilisest struktuurist võib verejooks olla arteriaalne, venoosne, kapillaar (parenhümaalne) ja segatud.

Peatage verejooks.

On ajutine (eesmärgiga luua tingimused kannatanu edasiseks transportimiseks) ja lõplik verejooksu peatamine.

Välise verejooksu ajutine peatamine

teostatakse esmase meditsiinilise, eelmeditsiini- ja esmaabi andmisel. Kasutatakse järgmisi meetodeid:

Arteri sõrme surve;

Maksimaalne jäseme painutus;

Žguti pealekandmine;

Survesideme paigaldamine;

Klambri paigaldamine haavale (esmaabi);

Haava pakkimine (esmaabi).

Kvalifitseeritud kirurgilise abi osutamisel suure veresoone kahjustuse korral viiakse läbi ajutine šunteerimine (verevoolu taastamine ajutise proteesi kaudu) - see on ainus meetod verejooksu ajutiselt peatamiseks.

abi tüüp.

Verejooksu lõplik peatumine

(välimine ja sisemine) on kvalifitseeritud ja spetsialiseeritud kirurgilise abi ülesanne. Kasutatakse järgmisi meetodeid:

Ligatuuri paigaldamine veritsevale veresoonele (soone ligeerimine haavas);

Laeva ligeerimine kogu ulatuses;

Külg- või ringikujulise vaskulaarse õmbluse paigaldamine;

Veresoonte autoplastika (erihoolduse pakkumisel).

Esmaabi:

Hemostaasi kontroll; žguti revideerimine (žguti nihutamine, mille viibimisaeg läheneb maksimumile, sõrmesurve); hemostaatiliste klambrite, ligatuuride rakendamine. Veeni- ja kapillaarhaiguste korral kasutatakse survesidet.

Kvalifitseeritud abi:

Välise verejooksu lõplik peatumine toimub riietusruumis, kuhu saadetakse kompenseeritud šoki või jätkuva välise verejooksuga kannatanud, samuti žgutiga selle ülevaatamiseks ja eemaldamiseks. Dekompenseeritud šokiga ja täielikult lõpetatud ajutise verejooksu peatamisega ilma žgutti kasutamata ohvrid saadetakse šokivastasesse osakonda; verejooksu lõplik peatumine neil lükatakse šokist taastumiseni.

Verejooksu lõplik peatamine toimub tavaliselt paralleelselt haava esmase kirurgilise raviga ja see seisneb sidemete paigaldamises kahjustatud veresoontele.

Väikesi anumaid saab koaguleerida.

Verejooksu lõpliku peatamise meetodid, olenevalt kasutatud meetodite iseloomust, jagunevad mehaanilisteks, füüsikalisteks (termilisteks) ja keemilisteks.

Mehaanilised meetodid.

Verejooksu peatamise mehaanilised meetodid on kõige usaldusväärsemad. Kui suured veresooned, keskmise suurusega anumad või arterid on kahjustatud, viib usaldusväärse hemostaasi ainult mehaaniliste meetodite kasutamine.

Laeva ligeerimine.

Veresoonte ligeerimist on kahte tüüpi:

veresoone ligeerimine haavas;

Laeva ligeerimine kogu ulatuses.

Anuma ligeerimine haavas.

Kindlasti on eelistatav anuma sidumine haavas otse vigastuskohas. See verejooksu peatamise meetod häirib minimaalse hulga kudede verevarustust.

Kõige sagedamini rakendab kirurg operatsioonide ajal veresoone hemostaatilise klambri ja seejärel ligatuuri (ajutine meetod asendatakse lõpliku meetodiga). Alternatiiviks ligeerimisele on veresoone lõikamine – metallist klambrite (klambrite) asetamine veresoone kasutades spetsiaalset lõikurit. Seda meetodit kasutatakse laialdaselt endoskoopilises kirurgias.

Laeva ligeerimine kogu ulatuses

Anuma ligeerimine kogu ulatuses erineb põhimõtteliselt haava ligeerimisest. Siin räägime vigastuskohale proksimaalse üsna suure, sageli peamise kehatüve ligeerimisest. Sellisel juhul blokeerib ligatuur väga usaldusväärselt verevoolu läbi peamise veresoone, kuid verejooks, ehkki vähem tõsine, võib jätkuda tagatiste ja vastupidise verevoolu tõttu.

Peamine puudus veresoone ligeerimisel üle selle pikkuse on see, et verevarustusest jääb ilma palju suurem kogus kude kui haava ligeerimisel. See meetod on põhimõtteliselt halvem ja seda kasutatakse sundmeetmena.

Anuma ligeerimiseks piki selle pikkust on kaks näidust.

Kahjustatud veresoont ei ole võimalik tuvastada, mis juhtub suure lihasmassi verejooksu korral (massiivne verejooks keelest - kaelal olev keelearter on seotud Pirogovi kolmnurgaga; verejooks tuhara lihastest - sisemine niudearter on seotud, jne.);

Sekundaarne arrosiivne verejooks mädasest või mädanevast haavast (haava sidumine on ebausaldusväärne, kuna on võimalik veresoone tühjenemine ja korduv verejooks, lisaks aitavad manipulatsioonid mädase haavaga kaasa põletikulise protsessi progresseerumisele).

Tehnika viiakse läbi vastavalt topograafilistele ja anatoomilistele andmetele: veresoon paljastatakse ja ligeeritakse piki kahjustustsooni proksimaalset pikkust.

Laeva õmblemine.

Juhtudel, kui veritsussoon ei ulatu haava pinnast kõrgemale ja seda ei ole võimalik klambriga haarata, kantakse läbi ümbritseva koe veresoone ümber rahakott või Z-kujuline õmblus, millele järgneb haava pingutamine. niit - anuma nn õmblemine

Veresoonte keerdumine, muljumine.

Meetodit kasutatakse harva väikeste veenide verejooksu korral. Veenile asetatakse klamber, see jääb mõneks ajaks anumale ja seejärel eemaldatakse. Lisaks saate klambrit mitu korda ümber oma telje pöörata. Sel juhul on veresoone sein maksimaalselt vigastatud ja see on usaldusväärselt tromboositud.

Haavatamponaad, surveside.

Haavatamponaad ja survesideme paigaldamine on meetodid verejooksu ajutiselt peatamiseks, kuid need võivad muutuda ka püsivaks. Pärast survesideme eemaldamist (tavaliselt 2-3. päeval) või tampoonide eemaldamist (tavaliselt 4-5. päeval) võib verejooks kahjustatud veresoonte tromboosi tõttu peatuda.

Vaskulaarne emboliseerimine.

Meetod viitab endovaskulaarsele kirurgiale. Seda kasutatakse verejooksu korral kopsuarterite harudest, kõhuaordi terminaalsetest harudest jne. Sellisel juhul kateteriseeritakse reiearter Seldingeri meetodil, kateeter viiakse verejooksu piirkonda, kontrastaine. süstitakse ja röntgenikiirte tegemisel tehakse kindlaks kahjustuse koht (diagnostiline etapp). Seejärel viiakse läbi kateetri kahjustuskohta kunstlik embool (spiraal, keemiline aine: alkohol, polüstüreen), mis sulgeb veresoone valendiku ja põhjustab kiiret tromboosi.

Meetod on vähetraumaatiline ja võimaldab vältida suuremaid kirurgilisi sekkumisi, kuid selle näidustused on piiratud. Lisaks on vaja erivarustust ja kvalifitseeritud töötajaid.

Spetsiaalsed meetodid verejooksu vastu võitlemiseks.

Verejooksu peatamise mehaanilised meetodid hõlmavad teatud tüüpi operatsioone: splenektoomia põrna parenhüümi verejooksu korral, mao resektsioon haavandi või kasvaja verejooksu korral, lobektoomia kopsuverejooksu korral jne.

Üks spetsiaalseid mehaanilisi meetodeid on obturaatorsondi kasutamine söögitoru veenilaiendite verejooksu korral - see on üsna tavaline maksahaiguste komplikatsioon, millega kaasneb portaalhüpertensiooni sündroom. Tavaliselt kasutatakse Blackmore'i sondi, mis on varustatud kahe mansetiga, millest alumine on fikseeritud kardiasse ja ülemine surub täispuhutuna kokku söögitoru veritsevad veenid.

Vaskulaarne õmblus ja veresoonte rekonstrueerimine.

Seda kasutatakse suurte põhiveresoonte kahjustamiseks, mille kaudu verevoolu seiskumine tooks kaasa kahjulikud tagajärjed patsiendi elule. Seal on käsitsi ja mehaanilised õmblused.

Manuaalse õmbluse pealekandmisel kasutatakse atraumaatilist mitteimenduvat õmblusmaterjali (keermed nr 4/0-7/0 olenevalt anuma kaliibrist).

Veresoonte rekonstrueerimisel kasutatakse proteeside ja šuntidena tavaliselt autovenoosset veeni, autoarterit või sünteetilist materjali. Sellise vaskulaarse operatsiooni jaoks peavad olema täidetud järgmised nõuded:

Kõrge tihedusaste;

Puuduvad verevoolu häired (konstriktsioonid ja turbulents);

Anuma luumenis võimalikult vähe õmblusmaterjali;

Veresoonte seinte kihtide täpne sobitamine.

Tuleb märkida, et ainult selle meetodiga säilib kudede verevarustus täielikult.

Füüsikalised meetodid.

Neid kasutatakse ainult väikeste veresoonte, parenhüümi ja kapillaaride verejooksu korral, kuna verejooksu keskmisest või suurest veenist ja eriti arterist saab peatada ainult mehaaniliselt.

Füüsikalisi meetodeid nimetatakse muidu termiliseks, kuna need põhinevad madala või kõrge temperatuuri kasutamisel.

Kokkupuude madala temperatuuriga.

Hüpotermia hemostaatilise toime mehhanismiks on veresoonte spasmid, verevoolu aeglustumine ja veresoonte tromboos.

Kohalik hüpotermia.

Verejooksu ja hematoomide tekke vältimiseks varasel operatsioonijärgsel perioodil asetage haavale 1-2 tunniks jääkott. Meetodit saab kasutada ninaverejooksu (jääkott ninasillal), maoverejooksu (jääkott epigastimaalses piirkonnas) korral.

Maoverejooksu korral on võimalik sondi kaudu makku viia ka külmi (+4°C) lahuseid (tavaliselt kasutatakse keemilisi ja bioloogilisi hemostaatilisi aineid).

Krüokirurgia.

Krüokirurgia on kirurgia erivaldkond. Siin kasutatakse väga madalaid temperatuure. Lokaalset külmutamist kasutatakse aju-, maksaoperatsioonidel ja vaskulaarsete kasvajate ravis.

Kokkupuude kõrge temperatuuriga.

Kõrge temperatuuri hemostaatilise toime mehhanism on veresoone seina valgu koagulatsioon, vere hüübimise kiirendamine.

Kuumade lahuste kasutamine

Meetodit saab rakendada operatsiooni ajal. Näiteks haava difuusse verejooksu, maksa, sapipõie voodi ja parenhüümi verejooksu korral sisestatakse haavale kuuma soolalahusega salvrätik ja hoitakse seda 5-7 minutit, pärast salvrätiku eemaldamist hemostaasi usaldusväärsust jälgitakse.

Diatermokoagulatsioon.

Diatermokoagulatsioon on verejooksu peatamiseks kõige sagedamini kasutatav füüsiline meetod. Meetod põhineb kõrgsagedusvoolude kasutamisel, mis põhjustab seadme otsaga kokkupuute kohas veresoone seina koagulatsiooni ja nekroosi ning trombi moodustumist. Ilma diatermokoagulatsioonita pole ükski tõsine operatsioon mõeldamatu. See võimaldab teil kiiresti peatada verejooks väikestest veresoontest ilma sidemeid (võõrkeha) jätmata ja seega opereerida kuiva haava. Elektrokoagulatsioonimeetodi puudus: liigse koagulatsiooni korral tekib ulatuslik nekroos, mis võib raskendada järgnevat haava paranemist.

Meetodit saab kasutada siseorganite verejooksu korral (mao limaskesta veritseva veresoone koagulatsioon läbi fibrogastroskoopi) jne. Elektrokoagulatsiooni saab kasutada ka kudede eraldamiseks koos väikeste veresoonte samaaegse koagulatsiooniga (instrument nimega “elektrooniline nuga” ), mis hõlbustab oluliselt mitmeid operatsioone, kuna sisselõikega ei kaasne sisuliselt verejooksu.

Antiblastilistel kaalutlustel kasutatakse elektrilist nuga onkoloogilises praktikas laialdaselt.

Laserfotokoagulatsioon, plasma skalpell.

Meetodid on seotud uute tehnoloogiatega kirurgias. Need põhinevad samal põhimõttel nagu diatermokoagulatsioon (kohaliku hüübimisnekroosi tekitamine), kuid võimaldavad verejooksu doseeritumalt ja leebemalt peatada. See on eriti oluline parenhüümi verejooksu korral.

Keemilised meetodid.

Kasutusmeetodi järgi jagunevad kõik keemilised meetodid kohalikeks ja üldisteks (või resorptiivseteks).

Kohalikud hemostaatilised ained.

Kohalikke hemostaatilisi aineid kasutatakse verejooksu peatamiseks haavas, maos ja muudel limaskestadel.

Vesinikperoksiidi. Kasutatakse haava verejooksu korral, see toimib trombi moodustumist kiirendades.

Vasokonstriktorid (adrenaliin). Kasutatakse verejooksu vältimiseks hamba väljatõmbamisel, süstitakse maoverejooksu ajal limaskestaalusesse kihti jne.

Fibrinolüüsi inhibiitorid - ε-aminokaproonhape. Süstitakse makku maoverejooksu korral.

Želatiinipreparaadid (gelaspon). Need on vahustatud želatiinist valmistatud käsnad. Nad kiirendavad hemostaasi, kuna kokkupuutel želatiiniga kahjustatakse trombotsüüte ja vabanevad tegurid, mis kiirendavad trombi moodustumist. Lisaks on neil tamponeeriv toime. Kasutatakse verejooksu peatamiseks operatsioonisaalis või juhusliku haava korral.

Vaha. Kasutatakse selle tamponeerivat toimet. Kolju kahjustatud lamedad luud suletakse vahaga (eriti kraniotoomia operatsiooni ajal).

Karbasokroom. Kasutatakse kapillaaride ja parenhüümi verejooksude korral. Vähendab veresoonte läbilaskvust, normaliseerib mikrotsirkulatsiooni. Kandke haavapinnale lahuses niisutatud salvrätikud.

Kaprofer. Kasutatakse mao limaskesta niisutamiseks ägedate haavandite erosioonide verejooksu ajal (endoskoopia ajal).

Resorptiivse toimega hemostaatilised ained

Patsiendi kehasse viiakse resorptiivse toimega hemostaatilised ained, mis kiirendavad kahjustatud veresoonte tromboosi protsessi.

· Fibrinolüüsi inhibiitorid (ε-aminokaproonhape).

Kaltsiumkloriid - kasutatakse hüpokaltseemia korral, kuna ioonid

· Kaltsium on üks vere hüübimissüsteemi tegureid.

· Tromboplastiini teket kiirendavad ained - ditsinoon, etamsülaat (lisaks normaliseerivad veresoone seina läbilaskvust ja mikrotsirkulatsiooni).

· Spetsiifilise toimega ained. Näiteks pituitriin emakaverejooksu korral: ravim põhjustab emaka lihaste kokkutõmbumist, mis vähendab emaka veresoonte valendikku ja aitab seega verejooksu peatada.

· K-vitamiini sünteetilised analoogid (vicasol). Soodustab protrombiini sünteesi. Näidustatud maksafunktsiooni häirete korral (nt koleemiline verejooks).

· Ained, mis normaliseerivad veresoonte seina läbilaskvust (askorbiinhape, rutiin, karbasokroom).

Vereülekande õpetuse ajalugu. Vereülekande immunoloogiline alus.

Vereülekande ajaloos on neli peamist perioodi.

Esimene periood: iidsetest aegadest kuni 1628. aastani.

Teine periood: 1628–1901.

Kolmas periood: 1901. aastast kuni esimese vereülekandeni, arvestades rühmakuuluvust (Kreil, V.N. Šamov).

Neljas periood: 1. vereülekandest, arvestades rühmakuuluvust, kuni tänapäevani.

Iidsetel aegadel levis paljude rahvaste seas paljude haiguste ravi vere neelamise teel. Nn vampirismi domineerimine jätkus keskajal.

Idee noorendada veresoonkonda infundeerides ei õigustanud ennast. On teada, et paavst Innocentius sai 1492. aastal kahelt noormehelt vereülekande.

1628. aastal kirjeldas Harvey vereringet ning 1667. aastal kandsid Denis ja Emerez Prantsusmaal patsiendile lamba verd, kuid neljas vereülekanne lõppes patsiendi surmaga. Erakorralisel kohtuistungil otsustati, et igasugust vere manustamist tohib kasutada ainult pärast Pariisi ülikooli arstiteaduskonna eriluba.

Kuid 1675. a Vatikan andis välja otsuse, millega keelati inimese vereülekanne ja tööd piirati ligi pooleteiseks sajandiks.

1819. aastal kandis inglise arst I. Blendel esmakordselt spetsiaalse aparaadi abil verd inimeselt inimesele.

Esimese eduka vereülekande Venemaal tegi G. Wolf 1832. aastal. Haavade ja verekaotuse korral kasutas vereülekannet N.I. Pirogov, I.V. Buyalsky, S.P. Kolomnin. Venemaal tehti 1832. aastast kuni 19. sajandi lõpuni 60 vereülekannet, kuid nii meil kui ka välismaal olid need tööd empiirilise iseloomuga.

Vereülekanne muutus teaduslikult põhjendatuks ja vähem ohtlikuks pärast seda, kui K. Landsteiner tegi 1901. aastal kindlaks, et inimese vereseerum võib teise inimese punaseid vereliblesid kokku kleepida (aglutineerida). Seda nähtust nimetatakse isohemaglutinatsiooni nähtuseks.

Landsteiner kirjeldas kolme veregruppi ja 1907. aastal kirjeldas Jansky neljandat veregruppi.

Veregrupi määrab rühmaspetsiifiliste antigeenide olemasolu erütrotsüütides - aglutinogeenid: A, B ja O ning seerumis - antikehad: α ja β. Aglutinogeenid on polüpeptiidid, mis ilmuvad loote arengu 3. kuul. Seerumi aglutiniine leidub globuliinifraktsioonides ja nende maksimaalne tiiter on vanuses 5–20 aastat.

Erütrotsüütide liimimise reaktsioon toimub juhtudel, kui kohtuvad samad aglutinogeenid ja aglutiniinid: A ja α, B ja β. Lisaks aglutineeritakse doonorivere punased verelibled.

K. Landsteineri ja J. Jansky klassifikatsiooni järgi eristatakse praegu järgmisi veregruppe:

I rühm - O (I) αβ - erütrotsüütides puuduvad aglutinogeenid A ja B, on aglutinogeen O, kuid kuna sellele puuduvad antikehad, pole sellel ka praktilist tähtsust. Nendel inimestel on plasmas ja seerumis aglutiniinid α ja β.

II rühm – A (II) β – erütrotsüüdid sisaldavad aglutinogeeni A, seerumis aglutiniini β.

III rühm – B (III) α – aglutinogeen B erütrotsüütides, aglutiniin α seerumis.

IV rühm - AB (IV)o - erütrotsüüdid sisaldavad aglutinogeene A ja B, seerumis aglutiniinid puuduvad.

Veregrupp ei muutu kogu inimese elu jooksul.

K. Landsteineri avastuse põhjal 1907. a. G. Kreil tegi esimese vereülekande grupikuuluvust arvestades. 1919. aastal tegi Venemaal esimese vereülekande, võttes arvesse rühma kuuluvust, V.N. Šamov.

Naatriumtsitraat, mille 1914. aastal V. A. Jurevitš ja N. K. Rosengart pakkusid välja vere hüübimise ennetamiseks, võimaldas alustada selle säilimise uurimist. 1934. aastal jagasid hiilgavad kodumaised teadlased A. N. Filatov ja N. G. Kartaševski esimestena maailmas doonorivere fraktsioonideks, pannes aluse komponentide ja veretoodete tootmisele ning määratledes transfusioloogia uue, kaasaegse suuna – kasutamise. üksikud komponendid vereülekandeks ja verefraktsioonid.

1940. aastal avastasid Landsteiner ja Wiener veel ühe inimese punastes verelibledes sisalduva antigeeni, nimetades selle Rh-ks (Rh-faktor).

Reesusfaktor, nagu selgus, jaotub üksikute rasside esindajate vahel ebaühtlaselt. Euroopa elanikkonna hulgas on see antigeen 85% inimestest (Rh - positiivsed) ja 15% (Rh - negatiivsed isikud) see puudub. Mongoloidide rassi inimeste hulgas on reesusnegatiivseid inimesi vaid 0,5%.

Praegu on reesussüsteemi (Rh - Hr) 6 peamist tüüpi antigeene, mis moodustavad polüalleelse süsteemi:

Rh (D), rh | (C), rh || (E)

Hr (d), hr | (c), hr (e).

Neist kõige olulisem on Rh-antigeen, millel on suurim immuunaktiivsus.

Landsteineri ja Wieneri avastus määras kindlaks iga vereülekande jaoks vajalikud põhinõuded: transfusioon, võttes arvesse ühilduvust ABO ja Rh antigeenidega.

Erütrotsüütide rühmasüsteemid. AB0 rühma süsteem ja Rh rühma süsteem. Veregruppide määramise meetodid ABO ja Rh süsteemide abil.

Sõltuvalt aglutinogeenide A ja B olemasolust erütrotsüütides ning vastavatest aglutiniinidest α ja β seerumis jagatakse kõik inimesed nelja rühma:

Rühm O (I) – erütrotsüütides puuduvad aglutinogeenid, seerumis aglutiniinid α ja β.

Rühm A (II) - aglutinogeen A erütrotsüütides, aglutiniin β seerumis.

Rühm B (III) - aglutinogeen B erütrotsüütides, aglutiniin α seerumis.

Grupp AB (IV) - erütrotsüüdid sisaldavad aglutinogeene A ja B, seerumis aglutiniinid puuduvad.

Hiljuti on AB0 süsteemis avastatud klassikaliste antigeenide A ja B, aga ka teiste antigeenide sorte.

Veregrupi määramise aluseks on otsese hemaglutinatsiooni reaktsioon toatemperatuuril, mis areneb välja samade aglutiniinide ja aglutinogeenide kohtumisel.

Veregrupi määramiseks ABO süsteemi järgi on kolm võimalust:

1. piisava tiitriga looduslikke aglutiniini sisaldavate standardseerumite kasutamine, mis võimaldab kindlaks teha, millised aglutinogeenid sisalduvad uuritava vere punastes verelibledes;

2. anti-A, anti-B ja anti-AB immuunantikehi sisaldavate hübridoomipreparaatide kasutamine, mis võimaldavad tuvastada ka aglutinogeene A ja B uuritava vere punalibledes;

3. standardsete seerumite ja standardsete erütrotsüütide kasutamine (crossover meetod). Sel juhul määratakse samaaegselt nii aglutinogeenid kui ka vere aglutiniinid, mis võimaldab anda testitava vere kõige täielikumad rühmaomadused.

Esimese ja kolmanda meetodi kasutamisel võetakse 2 seerumit (seerumi kontroll), et vältida valede tulemuste saamist.

Veregrupi määramine standardseerumite abil.

Valge märguva pinnaga plaadile, plaadile, tabletile kantakse suured tilgad 3 esimese rühma standardset hemaglutineerivat seerumit 2 seerias klaasgraafikuga kirjutatud esimese 3 veregrupi nimetuste all. Iga seerum võetakse eraldi pipetiga. Kokku annab see 6 tilka seerumit (3 tilka 2 rea peale).

Seerumitilkade kõrvale asetatakse väike tilk uuritavat verd (veretilk peaks olema 5-10 korda väiksem kui tilk seerumit).

Segage puhta ja kuiva klaaspulgaga veretilgad seerumiga nii, et segu muutuks ühtlaselt punaseks. Iga tilga jaoks kasutatakse eraldi klaaspulka. Segamiseks võite kasutada ka klaasklaasi nurki.

Pärast tilkade segamist loksutage plaati 2-3 minutit, seejärel jätke 2 minutiks seisma. rahuolekus ja raputage uuesti, jälgides reaktsiooni kulgu. Reaktsiooniaeg peab olema vähemalt 5 minutit.

3 minuti pärast lisage tilkadele väike tilk isotoonilist naatriumkloriidi lahust, samal ajal plaati (plaati, tabletti) aeglaselt loksutades.

Saadud tulemusi võetakse arvesse 5 minuti pärast.

Tulemuste tõlgendamine.

Hemaglutinatsiooni reaktsioon võib olla positiivne ja negatiivne.

Positiivse reaktsiooni korral tekivad pärast uuritava vere segamist seerumiga väikesed aglutinaatide helbed, mis üksteisega ühinedes moodustavad suuri palja silmaga nähtavaid helbeid. Sel juhul muutub seerum värvituks või peaaegu värvituks.

Negatiivse reaktsiooni korral jääb seerumi ja vere segu kogu vaatlusperioodi vältel ühtlaselt punaseks ning aglutinaate selles ei tuvastata.

Uuringu õige tõlgendamise eelduseks on reaktsioonitulemuste kokkulangevus sama rühma erinevate seeriate seerumitega.

Kirjeldatud uuringu läbiviimisel on võimalik 4 positiivsete ja negatiivsete tulemuste kombinatsiooni:

Kõigis tilkades on uuritava vere ja standardseerumi erütrotsüütide segu värvitud ühtlaselt punaseks ja aglutinatsiooni ei tuvastata kuskil, s.t. Aglutinatsioonireaktsioon on negatiivne kõigi 6 tilga puhul. See viitab aglutinogeenide α ja β puudumisele uuritava vere erütrotsüütides, s.o. – selle kuulumise kohta O (I) rühma.

Kui aglutinatsioonireaktsioon tekkis testitava vere segamisel O (I) ja B (III) rühma seerumitega, tähendab see, et uuritava vere erütrotsüüdid sisaldavad aglutinogeeni α, s.o. see kuulub A (II) rühma.

Uuritava vere erütrotsüütide aglutinatsiooni korral O (I) ja A (II) rühma standardseerumitega võib väita, et erütrotsüütide membraanil on aglutinogeen β, s.o. veri kuulub B (III) rühma.

Kui aglutinatsioon toimus kõigis tilkades, võib see viidata aglutinogeenide α ja β esinemisele uuritava vere erütrotsüütides, kuid seda saab kinnitada ainult mittespetsiifilise aglutinatsiooni välistamisega, mille puhul sellistel juhtudel tehakse rühmaga kohustuslik kontrolluuring. IV seerum. Kui aglutinatsioonireaktsioon ei arene, võime eelmises katses kindlalt eitada mittespetsiifilist aglutinatsiooni ja klassifitseerida testitud veri AB (IV) rühma.

Veregrupi määramine zolikloonide abil.

Kolikoonide, aga ka polüklonaalsete seerumite kasutamine võimaldab määrata veregruppi AB0 süsteemi järgi, tänu erütrotsüütide aglutinogeenide tuvastamisele otseses hemaglutinatsioonireaktsioonis.

Kolikoonid anti-A, anti-B ja anti-AB on klassi M monoklonaalsed antikehad, mida toodavad hiire hübridoomid.

1) Suured tilgad anti-A, anti-B ja anti-AB kolikoonid kantakse tasapinnale eraldi pipettide abil vastavate siltide all.

2) Reaktiivide tilkade kõrvale kantakse 10 korda väiksemad tilgad uuritavat verd (iga reaktiivitilga kõrvale üks tilk verd).

3) Veri segatakse reagentidega eraldi klaaspulkade abil.

4) Taldrikut või tabletti raputatakse 3 minutit.

5) Võtke arvesse reaktsiooni.

Tulemuste tõlgendamine.

Uurimistulemuste jaoks on võimalik saada 4 võimalust:

1) Kui aglutinatsioonireaktsioon ei ole välja kujunenud anti-A, anti-B ja anti-AB kolikoonidega, siis tuleb uuritav veri klassifitseerida 0 (I) rühma, kuna selle punased verelibled ei sisalda aglutinogeene A ja B. .

2) Kui pärast tilga testitava vere segamist anti-A ja anti-AB reaktiividega täheldatakse aglutinatsioonireaktsiooni, tähendab see, et punased verelibled sisaldavad aglutinogeen A ja uuritav veri tuleks klassifitseerida rühma A (II) . Sel juhul ei toimu aglutinatsiooni anti-B kolikooniga.

3) Kui anti-B ja anti-AB tsoliklooniga täheldatakse aglutinatsioonireaktsiooni, kuid anti-A tsoliklooniga seda ei esine, kuulub uuritav veri B (III) rühma, kuna selle erütrotsüüdid sisaldavad aglutinogeen B.

4) Kui positiivset aglutinatsioonireaktsiooni täheldatakse kõigis 3 tilgas, kus reaktiivid on segatud uuritava vere tilkadega, sisaldavad uuritava vere punased verelibled aglutinogeene A ja B, mis tähendab, et veri kuulub AB (IV) rühma. Grupp. Kuid selle fakti põhjendatud väitmiseks on vaja välistada spontaanne mittespetsiifiline reaktsioon. Selleks segage lennukil tilk uuritavat verd tilga isotoonilise naatriumkloriidi lahusega. Kui kontrolluuringus aglutinatsiooni ei esine, võib uuritava vere kindlalt määrata AB (IV) rühma.

Veregrupi määramine ristmeetodil.

See veregrupi määramise meetod hõlmab nii aglutinogeenide samaaegset määramist uuritava vere punalibledes kui ka selle plasmas või seerumis sisalduvate aglutiniinide määramist. Diagnostiliste ainetena kasutatakse nii standardseid hamaglutineerivaid seerumeid kui ka standardseid erütrotsüüte, millel on teadaolev rühmakuuluvus.

1) Eelnevalt tehtud märgistuse all kantakse valge märguva pinnaga plaadile suured tilgad kahe seeria esimese 3 rühma standardset hemaglutineerivat seerumit. Seerumitilkade maht peab olema vähemalt 0,1 ml. Nii saate 6 tilka, mis on paigutatud 2 rida.

2) Plaadi alumisele osale kantakse väikesed tilgad (0,01 ml) esimese 3 rühma standardsete erütrotsüütide suspensiooni, samuti vastavate tähiste all.

3) Tsentrifuugitud verd sisaldavast katseklaasist eemaldage seerum (plasma) pipetiga ja segage suured tilgad plasmat (seerumit) mahuga 0,1 ml standardsete punaste verelibledega.

Kasutades samu pipette, tilgutage standardsete hemaglutineerivate seerumite tilkade kõrvale väikesed (0,01 ml) tilgad uuritava vere punaliblede setet.

4) Tilgad, milles uuritava vere erütrotsüüdid on segatud standardseerumitega ja uuritava vere plasma standardsete erütrotsüütidega, segatakse eraldi klaaspulkadega, plaati loksutatakse, seejärel jäetakse 1-2 minutiks üksi ja loksutatakse uuesti. Tekkimisreaktsiooni jälgitakse vähemalt 5 minutit.

5) 3 minuti pärast lisage kõikidele tilkadele tilk soolalahust, loksutage plaati uuesti, et reaktiivid seguneksid paremini ja võtke tulemusi arvesse 5 minuti pärast.

Tulemuste tõlgendamine.

Tulemuste tõlgendamine hõlmab standardsete erütrotsüütide interaktsiooni tulemuste võrdlemist uuritava vereplasmaga ja standardsete hemaglutineerivate seerumite ja vere erütrotsüütidega, mille rühm tuleb kindlaks määrata. Võimalikud on 4 kombinatsiooni:

1) Testitud vere standardsete erütrotsüütide seerumitega suhtlemisel ei tekkinud üheski proovis aglutinatsiooni. See näitab aglutinogeenide A ja B puudumist erütrotsüütides. Standardsete erütrotsüütide segamisel uuritava vereplasmaga ei toimu aglutinatsiooni ainult 0(I) rühma erütrotsüütidega, küll aga A(II) ja B( rühma erütrotsüütidega). III). Viimane kinnitab, et uuritud veri kuulub 0(I) rühma, sest näitab alfa- ja beeta-aglutiniinide olemasolu tema seerumis.

2) Kui uuritava vere erütrotsüüdid interakteerusid standardseerumitega, tekkis aglutinatsioon rühmade 0(I) ja B(III) seerumitega erütrotsüütide immuunadhesiooni puudumisel rühma A(II) seerumi tilgas. See näitab aglutinogeen A esinemist uuritava vere erütrotsüütides. Uuritava vere seerum (plasma) annab aglutinatsiooni grupi standardsete erütrotsüütidega B(III), kuid mitte erütrotsüütidega 0(I) ja A(II). See kinnitab, et uuritud veri kuulub A(II) rühma, sest näitab beeta-aglutiniini olemasolu seerumis.

3) Kui aglutinatsioonireaktsioon 0(I) ja A(II) rühmade standardseerumitega on positiivne, määratakse aglutinogeen B olemasolu uuritava vere erütrotsüütides, s.o. kinnitatakse, et see kuulub B (III) rühma. Kui uuritava vere seerum (plasma) segada standardsete erütrotsüütidega, osutub aglutinatsioonireaktsioon negatiivseks rühmade 0(I) ja B(III) erütrotsüütidega, kuid positiivseks rühma A(II) erütrotsüütidega. Seega tuvastatakse alfa-aglutiniini esinemine uuritavas vereseerumis, mis kinnitab, et uuritav veri kuulub B (III) rühma.

4) Testvere erütrotsüüdid segades standardseerumitega, saadakse aglutinatsioonireaktsioon kõigis 6 tilgas, kus testitavad erütrotsüüdid segati 2 seerias esimese 3 rühma seerumitega. Kontrolluuringus AB(IV) rühma seerumiga osutus aglutinatsioonireaktsioon negatiivseks, mis viitab sellele, et testitud veri kuulub AB(IV) rühma. Uuritava vere seerumi (plasma) ja standardsete erütrotsüütide interaktsiooni tulemuste uuring näitab kõigil juhtudel aglutinatsiooni puudumist, mis näitab looduslike aglutiniinide puudumist aglutinogeenide A ja B vastu uuritava vere plasmas, st. kinnitab oma kuulumist AB (IV) gruppi.

Rh vere määramine

Praegu on vere Rh-staatuse määramiseks mitmeid viise (määrates Rh 0 D antigeeni olemasolu või puudumise erütrotsüütides. Tuleb märkida, et Rh-faktor D (Rh 0 D) mängib transfusioloogias suurimat rolli, mistõttu tavaliselt kasutatavad Rh-staatuse testid on Seda tüüpi Rh-antigeen tuvastatakse.

Rh staatuse määramine anti-D-Super zolikooni abil.

Selle ravimi toimeaineks on monoklonaalsed täielikud reesusvastased antikehad, mis kuuluvad Ig M klassi.

1. Rh staatuse määramine tasapinnal.

Kandke 1 tilk Tsoliklon Anti-D-Cynepi niisutatava pinnaga plaadile.

Lähedusse asetatakse tilk uuritavat verd või 5-10 korda väiksema mahuga punaste vereliblede suspensioon.

Veri (punaste vereliblede suspensioon) segatakse reaktiiviga.

20-30 sekundit pärast segamist loksutage plaati kergelt 3 minutit.

Tulemusi võetakse arvesse palja silmaga kontrollimisel.

Tulemuste tõlgendamine.

Aglutinatsiooni ilmnemine uuritava vere segamisel reaktiiviga viitab sellele, et punased verelibled sisaldavad Rh 0 D antigeeni, s.o. on Rh-positiivsed. Aglutinatsiooni puudumisel loetakse uuritav veri Rh-negatiivseks.

Rh faktori Rh 0 (D) määramine konglutinatsioonireaktsiooniga, kasutades želatiini.

Lisage 2 katseklaasi 1 tilk uuritavate erütrotsüütide suspensiooni ja 2 tilka 46-48 kraadini kuumutatud želatiini 10% lahust.

Lisage ühte katseklaasi 2 tilka rühmaspetsiifilist (st ABO süsteemi järgi samasse rühma kui uuritavad punased verelibled) Rh-vastast inimese seerumit. Seerumit ei lisata teise katsutisse (see kontrollib aglutinatsiooni spetsiifilisust)

Paralleelselt uuritakse samal viisil standardseid Rh-positiivseid ja Rh-negatiivseid erütrotsüüte eraldi märgistatud katseklaasides (need segatakse Rh-vastase seerumi ja želatiini lahusega, nagu on kirjeldatud eelmistes lõikudes).

Katseklaaside sisu segatakse ja katseklaasid asetatakse 15 minutiks 46-48 kraadise temperatuuriga veevanni või 30 minutiks sama temperatuuriga termostaadi.

Pärast määratud aja möödumist eemaldatakse katseklaasid termostaadist (veevannist) ja igasse neist lisatakse 5-8 ml soolalahust, millega katseklaaside sisu põhjalikult segatakse.

Tulemusi hinnatakse vaadeldes torusid läbiva valguse käes palja silmaga või läbi 2-5-kordse suurendusega suurendusklaasi.

Tulemuste tõlgendamine.

Kui tulemus on positiivne (testitavad erütrotsüüdid on Rh-positiivsed ja annavad aglutinatsioonireaktsiooni anti-Rh seerumitega), on aglutinaadid peaaegu värvi muutnud vedeliku taustal selgelt nähtavad. Kui tulemus on negatiivne, värvub vedelik katseklaasis koos uuritud punaste vereliblede suspensiooniga ühtlaselt punaseks või roosaks ning aglutinaadihelbeid ei tuvastata. Tulemus loetakse tõeseks aglutinatsiooni olemasolul paralleelkatses standardsete Rh-positiivsete erütrotsüütidega ja aglutinatsiooni puudumisel katses standardsete Rh-negatiivsete erütrotsüütidega, samuti katseklaasis, mis sisaldab ainult testitavaid erütrotsüüte ja želatiini (reaktsiooni spetsiifilisuse kontroll).

Positiivne tulemus näitab, et uuritava vere punased verelibled sisaldavad Rh-antigeeni (s.t. nad on Rh-positiivsed), negatiivne tulemus aga seda, et testitavad punased verelibled ei sisalda Rh-antigeeni, s.t. on Rh negatiivsed.

Lisand. Uurimiseks võib kasutada kas natiivset verd või säilitusainega segatuna, kuid viimasel juhul tuleb säilitusainet pesta kümnekordse koguse isotoonilise naatriumkloriidi lahusega. Lisaks tuleks igal juhul, kui seda meetodit kasutades määratakse Rh-staatus, kasutada rühmaspetsiifilisi 2 seeria Rh-vastaseid seerumeid (seerumi kontroll).

Rh staatuse määramine universaalse anti-Rh 0 (D) reaktiivi abil.

Universaalne anti-Rh reaktiiv on inimese seerum, mis sisaldab anti-Rh antikehi, kuid millel puuduvad alfa- ja beeta-antikehad, mistõttu saab seda kasutada mis tahes ABO-süsteemi rühma vere Rh-staatuse määramiseks. Reaktsiooni kulgemise tagamiseks lisatakse sellele 33% polüglütsiini või 20% albumiini lahust.

Asetage 1 tilk verd või punaste vereliblede suspensiooni koonilisse katsutisse.

Lisage 2 tilka universaalset reesusvastast reaktiivi ja segage uuritava verega.

Kallutage katseklaasi nii, et selle sisu leviks üle seinte, ja pöörake katseklaasi aeglaselt ümber vertikaaltelje, et punaste vereliblede ja reaktiiviga paremini kokku puutuda 5 minuti jooksul.

5 minuti pärast lisada 2-3 ml isotoonilist naatriumkloriidi lahust ja segada (loksutamata) katseklaasi sisu.

Tulemust võetakse arvesse katseklaasi sisu uurides läbiva valguse käes palja silmaga.

Tulemuste tõlgendamine.

Kui aglutinaadid esinevad ja vedelik katseklaasis on selge, sisaldavad testitavad punased verelibled Rh 0 (D) antigeeni ja uuritav veri on Rh-positiivne. Kui puuduvad aglutinaadid ja vedeliku roosa värvus, mis annab katseklaasi loksutamisel pärlmuttervärvi, on uuritav veri Rh-negatiivne.

Individuaalse ühilduvuse (AB0) ja Rh-ühilduvuse määramise tähendus ja meetodid. Bioloogiline ühilduvus. Vereülekandearsti kohustused.

Doonori ja retsipiendi vere individuaalse sobivuse testid.

Individuaalse sobivuse testide läbiviimisel tehakse kindlaks, kas retsipiendi plasmas (seerumis) on doonori punaste vereliblede vastu suunatud antikehi, mis võivad põhjustada punaste vereliblede aglutinatsiooni retsipiendi veresoonkonnas, millele järgneb nende hemolüüs. Kuna doonori vereplasmas sisalduvaid antikehi lahjendatakse vereülekande käigus oluliselt suurema koguse retsipiendi verega koos nende tiitri langusega, siis vastupidisel seosel (st doonori antikehad retsipiendi erütrotsüütide antigeenide suhtes) ei ole transfusioloogias kliinilist tähtsust.

Doonori ja retsipiendi vere kokkusobivuse test lennukis toatemperatuuril.

Valgele märguva pinnaga plaadile kantakse suur tilk (pipetiga võetud 2-3 tilka) retsipiendi seerumit või plasmat.

Sellele lisatakse 10 korda väiksem tilk doonoriverd.

Doonori veri segatakse retsipiendi plasmaga (seerumiga) ja plaati loksutatakse 1-2 minutit. Seejärel jätke see 1-2 minutiks rahule.

5 minutit pärast reaktsiooni algust (pärast vere ja plasma tilkade segamist) võetakse arvesse reaktsiooni pärast tilga soolalahuse lisamist reaktiivide (veri ja plasma) segule.

Tulemuste tõlgendamine.

Plaat modelleerib, mis võib juhtuda saaja veresoonkonnas. Kui tekivad aglutinaatide helbed ning doonorivere ja retsipiendi plasma (seerumi) segu muutub heledamaks, ei saa selle doonori verd sellele retsipiendile üle kanda, sest Retsipiendi plasma sisaldab doonorivere erütrotsüütide antigeenide vastaseid antikehi. Kui vere ja plasma segu jääb punaseks ja aglutinaate ei tuvastata, näitab see täielike antikehade puudumist retsipiendi plasmas, mis võib põhjustada doonori vere punaliblede immuunkleepumist. Järelikult saab sellist verd üle kanda sellele konkreetsele doonorile, kelle plasmaga me manipuleerisime.

Doonori ja retsipiendi veresobivuse test 33% polüglütsiini lahusega (Rh-sobivuse test).

Katseklaasi pannakse suur tilk retsipiendi plasmat (seerumit) (pipetiga 2-4 tilka).

Lisage väike tilk doonoriverd (vere ja plasma mahu suhe 1:10)

Saadud reaktiivi segule lisatakse tilk 33% polüglütsiini lahust.

Katseklaasi sisu segatakse põhjalikult, katseklaasi kallutatakse nii, et sisu leviks üle selle seinte, ja pööratakse aeglaselt ümber vertikaaltelje 5 minutit, tagades katseklaasi sisu elementide võimalikult täieliku kontakti kõigiga. muud.

5 minuti pärast lisatakse katseklaasi 3-4 ml isotoonilist naatriumkloriidi lahust ja sisu segatakse loksutamata.

Tulemusi arvestatakse katseklaasi sisu uurides palja silmaga või 2-5x suurendusega suurendusklaasi all.

Tulemuste tõlgendamine.

Kui ilmuvad aglutinaadihelbed ja vedelik katseklaasis muutub selgeks, ei sobi doonori veri selle retsipiendi verega. Kui katseklaasis olev vedelik on ühtlaselt punase värvusega ja aglutinaate ei tuvastata, võime järeldada, et retsipiendi plasmas ei ole mittetäielikke antikehi doonori punaste vereliblede antigeenide vastu ja seetõttu saab selle doonori veri sellele retsipiendile ülekantud.

Sobivuse test 10% želatiinilahusega (Rh-sobivuse test).

Katseklaasi pannakse 1 tilk pestud doonori punaseid vereliblesid.

Lisage doonori punastele verelibledele 2 tilka soojendatud 10% želatiinilahust ja 2 tilka retsipientseerumit.

Segage katseklaasi sisu hoolikalt.

Asetage katseklaas 10 minutiks veevanni temperatuurile 46-48 kraadi.

Pärast määratud aja möödumist lisage katseklaasi 5-8 ml isotoonilist naatriumkloriidi lahust ja segage katseklaasi sisu tagurpidi (ilma loksutamata).

Tulemusi arvestatakse palja silmaga või 2-5x suurendusega suurendusklaasi all.

Tulemuste tõlgendamine.

Kui reaktsioon on positiivne, s.t. märgitakse aglutinaatide ilmnemist muutunud vedeliku taustal - seda doonoriverd ei saa sellele retsipiendile üle kanda. Kui vedelik katseklaasis on ühtlase värvusega ja aglutinaadihelbeid ei tuvastata, sobib doonori veri retsipiendi verega ja seda saab talle üle kanda.

Kaudne Coombsi test.

Selle testi sooritamisel (väga ülitundlik) pestakse doonori punaseid vereliblesid 8-10-kordse mahu isotoonilise soolalahusega, seejärel tsentrifuugitakse ning reaktsioonis kasutatakse settest pärinevaid punaseid vereliblesid, s.o. punased verelibled peaksid olema võimalikult vabad teistest rakuelementidest ja plasmast.

Üks väike tilk (0,01 ml) pestud doonori punaseid vereliblesid pannakse katseklaasi.

Lisage 3 tilka retsipientseerumit ja segage tuubi sisu hoolikalt.

Katseklaas asetatakse 45 minutiks termostaadi temperatuurile 37 kraadi.

Pärast määratud inkubatsiooniaega valatakse katseklaasi 8-10-kordne isotooniline soolalahus (naatriumkloriid) ja katseklaasi sisu segatakse.

Tsentrifuugige katseklaasi kuni punaste vereliblede settimiseni.

Pesemisprotseduuri korratakse 3-4 korda, eemaldades iga kord ettevaatlikult supernatant.

Punaste vereliblede suspensiooni saamiseks lisatakse pestud punastele verelibledele 4-5 tilka isotoonilist naatriumkloriidi lahust.

Üks tilk punaste vereliblede suspensiooni asetatakse valge märguva pinnaga plaadile.

Lisage 1-2 tilka antiglobuliini seerumit punaste vereliblede suspensioonile tasapinnal ja segage klaaspulgaga.

Plaati raputatakse perioodiliselt 10 minutit.

Tulemust võetakse arvesse palja silmaga või 2-5x suurendusega suurendusklaasi all.

Tulemuste tõlgendamine.

Kui pärast antiglobuliiniseerumi lisamist doonori erütrotsüütidele, mida inkubeeritakse retsipiendi seerumiga, tekivad vedela selginemisega aglutinaadid, sisaldab retsipiendi veri mittetäielikke antikehi Rh-antigeeni või doonori punaste vereliblede teiste isoantigeenide vastu ja seetõttu see doonoriveri ei saa. sellisele retsipiendile üle kanda. Kui aglutinatsiooni ei toimu, sobib antud doonori veri antud retsipiendi verega ja seetõttu võib selle talle üle kanda.

Vead rühma-, Rh- ja individuaalse ühilduvuse testide läbiviimisel.

Enamikul juhtudel on immunoseroloogiliste uuringute käigus tekkinud vead ja raskused seotud nende rakendamise tehnika rikkumistega. Harvemini võivad ekslike järelduste põhjuseks olla testitava vere individuaalsed omadused.

Kõigil küsitavate tulemuste saamise juhtudel on vaja uuringut korrata teiste seeriate reaktiividega, järgides rangelt proovi läbiviimise reegleid. Kui saadakse uuesti küsitavad tulemused, tuleb vereproov saata spetsiaalsesse laborisse analüüsimiseks.

Vigade ja raskuste levinumad põhjused immunoseroloogiliste uuringute läbiviimisel.

· Madala kvaliteediga reaktiivide kasutamine (aegunud, hägune, osaliselt kuivanud jne)

· Reaktsioonide temperatuuritingimuste rikkumine. Veregrupi määramisel ABO süsteemi abil peaks ümbritseva õhu temperatuur olema vahemikus 15–25 kraadi Celsiuse järgi. Madalamatel temperatuuridel on võimalik külmade aglutiniinide põhjustatud mittespetsiifilise aglutinatsiooni areng ning kõrgetel temperatuuridel vähendavad alfa- ja beeta-aglutiniinid oma aktiivsust.

· Reageerivate ainete õigete vahekordade rikkumine. Seerumite testimisel (rühma kuuluvuse määramisel ABO süsteemi abil) peaks vere ja seerumi mahtude suhe olema 1:10 ning monoklonaalsete antikehade ja kolloididega proovide kasutamisel (reesuskuuluvuse määramisel) - 2- 3:10. Vastasel juhul võib aglutinatsioon jääda avastamata (aglutinaatide varjestamise tõttu aglutineerimata punaste vereliblede poolt või aglutinaatide väikese arvu tõttu).

· Ajutiste testimisgraafikute rikkumine. Aglutinatsiooni algus (eriti monoklonaalsete antikehadega testide tegemisel) võib olla märgatav esimestel sekunditel alates reageeriva keskkonna segamise hetkest, kuid reaktsioon tuleb registreerida rangelt määratletud ajal, sest mõnikord on antigeenide sorte, millel on nõrk aglutineeritavus ja mis annavad hilise reaktsiooni (aglutinogeeni A sordid, harvemini - B).

· Kontrolluuringute läbiviimise vajaduse eiramine (näiteks AB(IV) rühma seerumiga rühma kuuluvuse määramisel standardse hegglutineerivate seerumite või kolloididega seotud testidega reesuskuuluvuse määramisel).

· Erütrotsüütide suurenenud aglutineeritus – võib täheldada raskete mädahaiguste, põletuste, maksatsirroosi, autoimmuun- ja hematoloogiliste haiguste korral.

· Erütrotsüütide aglutinatsiooni vähenemine – leitakse sageli leukeemia korral.

· Vere kimäärsus on väga haruldane nähtus, mis esineb kaksikutel, doonori luuüdi siirdamise ajal või pärast teise rühma (sunnitud) vereülekannet, kuid kokkusobivat verd suurtes kogustes.

Ekslike uurimistulemuste vältimine seisneb kehtivate rühma- ja Rh-kuuluvuse määramise reeglite, ühilduvustestide ranges järgimises, võttes arvesse haiguse olemust ja retsipiendi üldist seisundit.

Bioloogiline proov.

Bioloogiline test on kohustuslik doonorivere, erütrotsüüte sisaldava söötme, plasma, leukotsüütide kontsentraatide ülekandmisel, sõltumata vereülekande mahust ja kiirusest.

Vahetult enne vereülekannet tehakse bioloogiline test, mis koosneb 10-15 ml transfusioonisöötme 3-kordsest vereülekandest joana või maksimaalsel kiirusel (2-3 ml minutis) 5-minutilise intervalliga, mille käigus lisatakse soolalahuseid. infundeeritakse tromboosi nõelte vältimiseks. Kui bioloogilise testi käigus ilmneb vähemalt üks sümptomitest, mis viitavad transfusioonisöötme kokkusobivusele, peatatakse selle ülekanne ja võetakse asjakohased meetmed. Nende sümptomite hulka kuuluvad külmavärinad, valu alaseljas ja alakõhus, pigistustunne ja valu rinnus, iiveldus, oksendamine, tahhükardia ja madal vererõhk. Üldnarkoosis tehtud operatsiooni ajal võivad kokkusobimatuse tunnusteks olla suurenenud kudede verejooks, vererõhu langus, tahhükardia suurenemine ja punase või pruuni uriini eraldumine (põie kateteriseerimise korral).

Vereülekanne. Vereülekande näidustused ja vastunäidustused. Kaasaegsed vereülekande reeglid vastavalt ABO ja Rh süsteemirühmadele. Vereülekande meetodid ja tehnikad.

Vereülekande näidustused määrati kindlaks selle teadaolevate toimemehhanismide järgi:

· Aseaine.

· Hemostaatiline.

· Immunostimuleeriv.

· Detoksifitseeriv.

· Kasutatakse parenteraalseks toitmiseks.

Nagu kogunenud kogemused on näidanud, ei olnud selline laialdane vereülekanne alati efektiivne, pealegi osutus see sageli ohtlikuks: lisaks punastele verelibledele sai patsient eluvõimetuid leukotsüüte, trombotsüüte, valke, antigeene. ja verega antikehad.

Korduvad vereülekanded viisid patsientide alloimmuniseerimiseni.

Praegu on vereülekande peamiseks näidustuseks äge massiline verekaotus vähemalt 25–30% kogumahust koos hemoglobiinisisalduse langusega alla 70–80 g/l, hematokriti langusega alla 25% ja vereringehäirete esinemisega.

Lisaks on vereülekanne näidustatud šoki ja terminaalsete seisundite korral, harvadel juhtudel vastsündinu hemolüütilise haiguse vahetusülekande ajal, operatsioonide ajal, millega kaasneb suur verekaotus.

Kõigil muudel juhtudel tuleks kasutada verefraktsioone või vereasendajaid.

Vereülekande vastunäidustused.

Vereülekandel ei ole absoluutseid vastunäidustusi.

Suhtelised vastunäidustused:

· Äge tserebrovaskulaarne õnnetus.

· Vereringepuudulikkus, II staadium. – III Art.

· Hüpertensioon III staadium.

· Maksa- ja neerupuudulikkus.

· Aktiivne (levinud) kopsutuberkuloos.

· Raskekujuline bronhiaalastma.

· Allergilised haigused.

Vereülekande reeglid.

Praegu on vere ja selle komponentide ülekandmine lubatud ainult sama rühma ja Rh - kuuluvuse korral.

Erandjuhtudel (tervislikel põhjustel) ühe rühma vere või selle komponentide puudumisel on lubatud O(I) rühma erütromaasi transfusioon, Rh - negatiivne, kuid mitte rohkem kui 500 ml (välja arvatud lapsed!).

Ühe rühma plasma puudumisel võib retsipiendile üle kanda AB(IV) rühma plasma.

Vere- või erütroosiülekannet teostav arst on kohustatud:

· Enne iga vereülekannet määrake veregrupp ja Rh – retsipiendi kuuluvus.

· Olles veendunud doonorivere sobivuses ja täitnud süsteemi, määrake doonori veregrupp ja Rh kuuluvus ning nõustuge hemokonil oleva märgistusega.

· Retsipiendi ja doonori vere individuaalse sobivuse test.

· Testige Rh-ühilduvust.

· Tehke bioloogilise sobivuse test.

Ülejäänud verd (10–15 ml) hemokonis pärast vereülekannet hoitakse külmkapis 48 tundi.

3 tunni jooksul pärast vereülekande lõppu mõõdetakse patsiendi kehatemperatuuri, pulssi ja vererõhku. Järgmisel hommikul tehakse vere- ja uriinianalüüsid.

Iga vere, selle fraktsioonide ja vereasendajate ülekanne registreeritakse vereülekande lehel, mis asub patsiendi haigusloos.

Vereülekande meetodid ja tehnikad:

Otsene vereülekanne. Veri kantakse masina abil otse doonori veenist retsipiendi veeni ilma säilitusaineid kasutamata.

Doonori nakatumise ohu tõttu seda praegu ei kasutata.

Kaudne vereülekanne. Doonoriverd säilitatakse hemokoonis ehk ampullis ja külmkapis temperatuuril t 0 + 4 0 C.

Vajadusel kasutatakse seda vereülekandeks ilma spetsiaalse kuumutamiseta. Vere ja selle fraktsioonide kaudset ülekannet kasutatakse väga laialdaselt.

Vere reinfusioon: patsiendi vereülekanne, mis valatakse seroossetesse õõnsustesse (kõhuõõne, pleura), suletud vigastuse või operatsiooni ajal. Veri võetakse spetsiaalse aparaadiga või selle puudumisel erakorralisel juhul filtreeritakse see läbi 8 kihi marli, lisatakse säilitusainet ja kantakse kohe veeni.

Meetod on väga tõhus.

Vastunäidustused: õõnesorganite kahjustus, vere olemasolu seroosses õõnes üle 12 tunni, vere hemolüüs.

Vere autotransfusioon. Seda kasutatakse plaanilises operatsioonis, kui paar päeva enne operatsiooni võetakse patsiendi veenist 400-500 ml verd, lisatakse säilitusainet, misjärel hoitakse hemokon külmkapis ning operatsiooni käigus patsiendi oma. vereülekanne tehakse.

Meetod on väga paljutõotav.

Vastunäidustused: esialgne aneemia patsiendil.

Vahetusvereülekanded on vere osaline või täielik eemaldamine vereringest koos samaaegse asendamisega sama koguse doonorverega.

Näidustused: vastsündinute hemolüütiline kollatõbi, vereülekande šokk, raske mürgistus. Sel juhul eemaldatakse veri ja infundeeritakse samaaegselt kiirusega 1000 ml 15–20 minuti jooksul.

Vahetusülekandeid kasutatakse harva.

Vere manustamise meetodid:

Praegu kasutatakse valdavalt intravenoosset vereülekannet.

Pärast ühilduvuse kontrollimist kantakse verd kõige sagedamini kubitaalveeni punktsiooni teel või harvem veeni asetatud spetsiaalse kanüüli kaudu. Kui on vaja üle kanda suurtes kogustes vereülekandekeskkonda, kasutatakse püsivat kateetrit, mis asetatakse tsentraalveeni (tavaliselt subklaviaveeni).

Tavaliselt kasutatakse tilkülekannet kiirusega 40–60 tilka minutis.

Kui veremahu kiireloomuline asendamine on vajalik, võib kasutada intravenoosset jet-vereülekannet.

Intraarteriaalse vere süstimine.

Näidustused: III – IV staadiumi šokk, terminaalsed seisundid.

Veri pumbatakse eelnevalt eksponeeritud perifeersesse arterisse rõhul 200–220 mm Hg. Art. kiirusega 200 ml 1,5 - 2 minutiga. Surve all manustatud veri ärritab angioretseptoreid ja tagab pärgarteri verevoolu taastumise.

Intraarteriaalset, intrakardiaalset veresüsti tehakse väga harva, ainult intensiivravi praktikas ja rindkere operatsioonide ajal.

Intraosseosne vereülekanne.

Hetkel praktiliselt kasutamata. Seda kasutati ulatuslike põletuste korral, kui perifeersed veenid olid kättesaamatud. Vereülekanne viiakse läbi rinnakusse, niudeluusse ja lubjaluusse kiirusega 5–30 tilka minutis.

Lisaks otseselt vereülekandega seotud tüsistustele on võimalik osteomüeliidi areng.

Pärast verejooksu ajutist peatumist rakendatakse kahjustatud veresoone tavaliselt hemostaatilise klambriga ja seejärel siduda kesk- ja perifeersed otsad ligatuuridega .

Kui suurest põhianumast tuleb verejooks, mis vajab säilitamist, tuleks selle terviklikkus taastada kasutades veresoonte õmblus .

Raskesti ligipääsetavatest kohtadest verejooksu korral kasutage verejooksu veresoone selektiivne emboliseerimine . Sel eesmärgil viiakse kahjustatud arterisse angiograafilise kateetri kaudu imenduva želatiinkäsna tükid, metallist spiraalid ja muud seadmed, mis toimivad teatud tüüpi pistikuna, mis ummistab kahjustatud veresoone. Arteriaalne emboliseerimine väldib sellises olukorras üldanesteesiat ja suuri operatsioone. Seda tüüpi verejooksu kontrolli eelistatakse vaskulaarse arrosiooniga seotud verejooksu korral, kuna sellises olukorras on kirurgiline sekkumine täis kõrge tüsistuste riski.

Kõik verejooksu lõpliku peatamise meetodid jagunevad tavaliselt mehaanilisteks, füüsikalisteks, keemilisteks ja bioloogilisteks.

Mehaanilised meetodid .

Surveside. Meetod seisneb tiheda ring- või spiraalse sideme kandmises jäsemele haava projektsioonis. See meetod võib olla viis verejooksu lõplikuks peatamiseks välise kapillaaride verejooksu ja saphenoosveenide kahjustuse korral.

Haava tamponaad. Verejooksu lõplikuks peatamiseks võib kasutada tamponaadi:

Kapillaaride välise verejooksu korral;

Nahaaluste ja väikeste süvaveenide kahjustuse korral tagatistega;

Väikese parenhüümi verejooksu korral.

Välise verejooksu korral(haava juuresolekul) võib tamponaadi kasutada vaid vajaliku abinõuna. Teatud juhtudel võib tamponaadi kasutada kirurgilise ravi viimase etapina, näiteks juhul, kui vere hüübimissüsteemi häirest (difuusne verejooks) on tingitud peatamatu kapillaarverejooks.

Parenhüümi verejooksu korral tamponaadi kasutatakse sagedamini. Tampoonide otsad tuuakse välja täiendavate sisselõigete kaudu.

Ninaverejooksude korral võib osutuda vajalikuks tamponaad. On olemas eesmine ja tagumine tamponaad: eesmine viiakse läbi väliste ninakäikude kaudu, tagumise teostamise tehnika on näidatud joonisel fig. 5-11. Peaaegu alati tekib stabiilne hemostaas.

Riis. 5-11. Ninaõõne tagumise tamponaadi meetod: a - kateetri läbiviimine läbi nina ja selle eemaldamine suuõõne kaudu väljapoole; b - tampooniga nailonniidi kinnitamine kateetri külge; c - kateetri tagasitõmbamine koos tampooni tagasitõmbamisega.

Veresoonte ligeerimine haavas. Kindlasti on eelistatav anuma sidumine haavas otse vigastuskohas. See verejooksu peatamise meetod häirib minimaalse hulga kudede verevarustust. Kõige sagedamini rakendab kirurg operatsiooni ajal veresoone hemostaatilise klambri ja seejärel ligatuuri (ajutine meetod asendatakse lõpliku meetodiga). Mõnel juhul, kui anum on enne kahjustust nähtav, ristatakse see kahe eelnevalt kinnitatud klambri vahel. Alternatiiviks ligeerimisele võib olla veresoone lõikamine – metallklambrite paigaldamine veresoonele spetsiaalse lõikuri abil. Seda meetodit kasutatakse laialdaselt endoskoopilises kirurgias.

Anuma õmblemine haavas. Juhtudel, kui veritsussoon ei ulatu haavaseina pinnast kõrgemale ja seda ei ole võimalik klambriga haarata, paigaldage läbi ümbritsevate kudede veresoone ümber Z-kujuline õmblus, millele järgneb niidi pingutamine - nii. nimetatakse anuma õmblemiseks (joon. 5-10).

Riis. 5-10. Veritseva anuma õmblemine

Lõikamine. Verejooksuks veresoontest, mida on raske või võimatu siduda, kasutatakse kärpimist - veresoonte kinnitamist hõbedaste metallklambritega. Pärast intrakavitaarse verejooksu lõppu eemaldatakse osa elundist (näiteks veritseva haavandiga mao resektsioon) või kogu organ (splenektoomia põrna rebendi korral). Mõnikord asetatakse spetsiaalsed õmblused näiteks kahjustatud maksa servale.

Laevade ligeerimine "kogu ulatuses". Meetodi olemus seisneb selles, et anum paljastatakse täiendava sisselõike kaudu ja ligeeritakse kahjustuskoha kohal. Me räägime vigastuskohale proksimaalse suure, sageli peamise kehatüve ligeerimisest. Sellisel juhul blokeerib ligatuur väga usaldusväärselt verevoolu läbi peamise veresoone, kuid verejooks, ehkki vähem tõsine, võib jätkuda tagatiste ja vastupidise verevoolu tõttu. Kõige olulisem puudus veresoone ligeerimisel üle selle pikkuse on verevarustuse puudumine suuremal hulgal koel kui haava ligeerimisel. See meetod on põhimõtteliselt halvem, seda kasutatakse sundmeetmena.

Anuma ligeerimiseks piki selle pikkust on kaks näidust.

Kahjustatud veresoont ei ole võimalik tuvastada, mis juhtub suure lihasmassi verejooksu korral (massiivne verejooks keelest - Pirogovi kolmnurgas on kaelal olev keelearter ligeeritud, verejooks tuhara lihastest - sisemine niudearter ligeeritakse, jne.).

Nendel juhtudel paljastatakse veresoon vastavalt topograafilistele ja anatoomilistele andmetele ja ligeeritakse piki kahjustustsooni proksimaalset pikkust.

Riis. Meetodid veresoone verejooksu lõplikuks peatamiseks: a - ligatuuri paigaldamine; b - elektrokoagulatsioon; c - anuma ligeerimine ja ristumiskoht vahemaa tagant; d - anuma ligeerimine selle pikkuses; d - laeva punktsioon.

Vaskulaarse õmbluse rakendamine. See on peamine lõpliku hemostaasi meetod suurte veresoonte kahjustamise korral. Seni on kõige sagedamini kasutusel käsiõmblus, mille jaoks kasutatakse atraumaatiliste nõeltega sünteetilisi niite.

Riis. 5-12.Carreli veresoonte õmblustehnika

Vaskulaarne õmblus on üsna keeruline meetod, mis nõuab kirurgi ja teatud instrumentide eriväljaõpet. Seda kasutatakse suurte põhiveresoonte kahjustamiseks, mille kaudu verevoolu seiskumine tooks kaasa kahjulikud tagajärjed patsiendi elule. Seal on käsitsi ja mehaanilised õmblused. Veresoonte õmblus peab olema väga tihendatud ja vastama järgmistele nõuetele: see ei tohi häirida verevoolu (ei ole ahenemist ega turbulentsi) ning soone luumenis peab olema võimalikult vähe õmblusmaterjali.

Veresooneseina erinevat tüüpi kahjustuste korral kasutatakse veresoonte rekonstruktiivseks sekkumiseks mitmesuguseid võimalusi: külgõmblus, külgplaaster, resektsioon otsast lõpuni anastomoosiga, proteesimine (veresoone asendamine), möödaviiguoperatsioon (vere jaoks möödaviigu loomine). ). Külgmised vaskulaarsed õmblused rakendatakse siis, kui veresoonel on tangentsiaalne haav. Pärast pealekandmist tugevdatakse õmblust fastsia või lihasega. Veresoonte rekonstrueerimisel kasutatakse tavaliselt siirikutena (proteeside ja šuntidena) sünteetilistest materjalidest valmistatud autoveine, autoartereid või veresoonte proteese.

Kunstlik veresoonte emboliseerimine. Meetod on klassifitseeritud endovaskulaarseks kirurgiaks. Praegu on välja töötatud ja kasutusele võetud kunstlikud veresoonte emboliseerimise meetodid, et peatada kopsu-, seedetrakti ja bronhiaalarterite ning ajuveresoonte verejooks. Seldingeri tehnika järgi kateteriseeritakse reiearter, viiakse kateeter verejooksu piirkonda, süstitakse kontrastainet ja röntgenikiirguse abil tuvastatakse kahjustuskoht (diagnostiline staadium). Seejärel viiakse läbi kateetri vigastuskohta kunstlik embool (polüstüreen, silikoon), mis sulgeb veresoone valendiku ja põhjustab kiiret tromboosi. Emboliseerimise kohas moodustub seejärel tromb. Meetod on vähetraumaatiline ja võimaldab vältida suuremaid kirurgilisi sekkumisi, kuid selle näidustused on piiratud, lisaks on vaja spetsiaalset varustust ja kvalifitseeritud spetsialiste. Emboliseerimist kasutatakse nii verejooksu peatamiseks kui ka operatsioonieelsel perioodil tüsistuste vältimiseks (näiteks neeruarteri emboliseerimine neerukasvaja korral järgnevaks nefrektoomiaks „kuivale neerule“).

Spetsiaalsed meetodid verejooksu vastu võitlemiseks. Verejooksu peatamise mehaanilised meetodid hõlmavad teatud tüüpi operatsioone: splenektoomia põrna parenhüümi verejooksu korral, gastrektoomia haavandi või kasvaja verejooksu korral, lobektoomia kopsuverejooksu korral jne.

Blackmore'i sond . Üks erilisi mehhaanilisi meetodeid on Blackmore obturaatorsondi kasutamine söögitoru veenilaiendite verejooksu korral – see on üsna tavaline maksahaiguste komplikatsioon, millega kaasneb portaalhüpertensiooni sündroom.

Blackmore'i toru, mis on maosond, mille otsas on kaks eraldi kanalit täis pumbatud õhupalli, mis ümbritseb sondi mansettide kujul. Esimene (alumine, mao) balloon, mis asub sondi otsast 5–6 cm kaugusel, on täispuhutuna palli kujuline, teine, vahetult esimese taga asuv balloon on silindri kujuga. Täitmata õhupallidega sond sisestatakse makku kuni kolmanda märgini. Seejärel täidetakse alumine balloon täis, lisades 40–50 ml vedelikku, ja sond tõmmatakse üles, kuni täispuhutud balloon kiilub mao südameosasse. Pärast seda täidetakse söögitorus asuv ülemine balloon, lisades 50–70 ml vedelikku. Nii surutakse täispuhutud õhupallide abil mao kardiaalse osa veenid ja söögitoru alumise kolmandiku veenid elundite seintele ja verejooks neist peatub.

Riis. Blackmore'i sond söögitoru veenilaienditest tingitud söögitoru verejooksu jaoks: a - enne õhupallide veega täitmist; b - pärast vedeliku manustamist

Füüsikalised meetodid lõplik verejooksu peatamine.

Mittemehaanilisi verejooksu peatamise meetodeid kasutatakse ainult väikeste veresoonte, parenhüümi ja kapillaaride verejooksu korral, kuna verejooksu keskmisest või suurest veenist ja eriti arterist saab peatada ainult mehaaniliselt. Verejooksu peatamise füüsilised meetodid põhinevad erinevate füüsikaliste tegurite kasutamisel, mis põhjustavad valkude koagulatsiooni või vasospasmi. Kõige sagedamini kasutatavad temperatuurid on madalad ja kõrged. Kõrge temperatuur koaguleerib valke ja madal temperatuur põhjustab vasospasmi.

Kudede lokaalne jahutamine. Külma lokaalne manustamine põhjustab vasospasmi, mis põhjustab verevoolu aeglustumist ja veresoonte tromboosi. Peaaegu igat tüüpi vigastusi saab jääkotiga ravida. Verejooksu ja hematoomide tekke vältimiseks varasel operatsioonijärgsel perioodil asetage haavale 1-2 tunniks jääkott. Meetodit saab kasutada ninaverejooksu (jääkott ninasillal), maoverejooksu (jääkott epigastimaalses piirkonnas) korral. Kui maoverejooks jätkub, võib magu loputada ka sondi kaudu külma (+4 C) veega (tavaliselt kasutatakse ka keemilisi ja bioloogilisi hemostaatilisi aineid).

Kudede lokaalne kuumutamine. Kuumutamine temperatuurini 50–55 °C tekitab samuti tõhusa vasospasmi ja põhjustab voolavas veres valkude koagulatsiooni. Kandke maksa või luu veritsevale pinnale kuumas isotoonilises naatriumkloriidi lahuses leotatud salvrätikud. 5-7 minuti pärast eemaldatakse salvrätikud ja jälgitakse hemostaasi usaldusväärsust.

Diatermokoagulatsioon - kõige sagedamini kasutatav füüsiline meetod verejooksu peatamiseks. Meetod põhineb kõrgsagedusvoolude kasutamisel, mis põhjustab seadme otsaga kokkupuute kohas veresoone seina koagulatsiooni ja nekroosi ning trombi moodustumist. Patsiendi kehale (reie, sääre, alaselja) rakendatakse suure pindalaga elektrood. Teine elektrood (töötav) on valmistatud skalpelli, nööbikujulise sondi või pintsettide kujul. Meetod võimaldab kiiresti peatada verejooks väikestest veresoontest ja opereerida “kuiva haava”, jätmata kehasse ligatuure (võõrkeha).

Elektrokoagulatsioonimeetodi puudused: see ei ole rakendatav suurtele veresoontele; kui liigne koagulatsioon on vale, tekib ulatuslik nekroos, mis raskendab järgnevat haava paranemist. Meetodit saab kasutada siseorganite verejooksu korral (mao limaskesta veritseva veresoone koagulatsioon läbi fibrogastroskoopi) jne.

Seda kasutatakse ka kudede eraldamiseks koos väikeste veresoonte samaaegse koagulatsiooniga (instrument on "elektrooniline nuga"), mis hõlbustab oluliselt mitmeid toiminguid, kuna sisselõikega ei kaasne sisuliselt verejooksu. Elektrinoaga tekitatud või elektrokoagulatsiooniga haav on steriilne ja ei veritse. Antiblastilistel kaalutlustel kasutatakse elektrilist nuga onkoloogilises praktikas laialdaselt.

Laserfotokoagulatsioon, plasma skalpell. Neid meetodeid peetakse kirurgias uuteks tehnoloogiateks ja need põhinevad samal põhimõttel nagu diatermokoagulatsioon (tekitab lokaalse koagulatsiooninekroosi), kuid võimaldavad verejooksu doseeritumalt ja õrnalt peatada. See on eriti oluline parenhüümi verejooksu korral. Seda meetodit kasutatakse ka kudede eraldamiseks (plasma skalpell). Laserfotokoagulatsioon ja plasmaskalpell on väga tõhusad ning suurendavad traditsioonilise ja endoskoopilise kirurgia võimalusi. Laser on elektronkiirgus, mis on fokuseeritud kiire kujul.

Laser skalpell. Meetod põhineb laserkiire termilisel toimel (fotokoagulatsioon). Laserskalpelli mõju kudedele on sarnane elektrinoa toimega. Laserskalpelle kasutatakse parenhüümsete organite operatsioonidel, kõrva-nina-kurguarsti praktikas (tonsillektoomia) jne.

Plasma skalpell. Meetod põhineb veritsevate veresoonte koagulatsioonil kõrgtemperatuurse plasmajoaga, s.o. mõju kudedele on sarnane diatermokoagulatsioonile ja laserskalpelli kasutamisele.

Keemilised ja bioloogilised meetodid verejooksu lõplik peatumine

Verejooksu peatamise keemiliste ja bioloogiliste meetodite toimepõhimõtted on vere hüübimise tõhustamine (kiirendamine), moodustunud trombide resorptsiooni (lüüsi) pärssimine, veresoonte spasmide moodustamine, mis viib verekaotuse kiiruse vähenemiseni, verevoolu aeglustamine. ja kiirendada trombide fikseerimist veresoone haava luumenis.

Hemostaatilised ained jagunevad üldisteks (resorptiivseteks) ja kohalikeks aineteks. Üldine toime areneb siis, kui aine satub verre, lokaalne – kokkupuutel veritsevate kudedega.

Ained üldiseks (resorptiivseks) kasutamiseks

Erinevate hemostaatiliste (hemostaatiliste) ainete üldine kasutamine (vere hüübimis- ja antikoagulatsioonisüsteemide kontrolli all). Üldise (resorptiivse) toimega hemostaatilisi aineid kasutatakse laialdaselt sisemise verejooksu korral. Patsiendi kehasse viiakse resorptiivse toimega hemostaatilised ained, mis kiirendavad kahjustatud veresoonte tromboosi protsessi.

Peamised ravimid on loetletud allpool.

Kõik verejooksu lõpliku peatamise meetodid võib jagada 4 rühma:

1) mehaaniline,

2) füüsiline,

3) keemiline,

4) bioloogiline.

Mehaanilised meetodid.

Need verejooksu peatamise meetodid hõlmavad veresoone ligeerimist haavas ja kogu ulatuses, veresoone väänamist, haava tamponaadi, veresoone kunstlikku embooliseerimist, veresoonte õmblust, arterite ja veenide auto- ja alloplastikat. Kui intrakavitaarne verejooks lõpuks peatatakse, eemaldatakse osa elundist (näiteks mao resektsioon maohaavandi korral, mis on tüsistunud gastroduodenaalse verejooksuga) või kogu elund (splenektoomia põrna rebendi korral).

Haavas veresoone ligeerimine on kõige usaldusväärsem ja levinum meetod verejooksu peatamiseks. Pärast veritseva veresoone kesk- ja perifeersete otste eraldamist haaratakse need hemostaatiliste klambritega ja seotakse ligatuuriga. Selleks, et vältida ligatuuri libisemist suure veresoone vigastuse korral, seotakse see pärast veresoone ümbritseva koe esialgset õmblust.

Veresoone ligeerimist selle pikkuses kasutatakse juhtudel, kui veritseva veresoone otste haavast ei ole võimalik tuvastada (näiteks kui vigastada on välis- ja sisemine unearter, suurem tuharaarter), kui ligeerimine haavas. haav on ebausaldusväärne (sekundaarse hilise verejooksu korral, kui arroseerunud anum asub põletikulise infiltraadi paksuses), samuti kudede olulise purustamise korral. Seda meetodit kasutatakse ka verejooksu vältimiseks operatsiooni ajal. Sellistel juhtudel, võttes arvesse topograafilisi ja anatoomilisi andmeid, avatakse veresoon ja ligeeritakse kogu selle pikkuses väljaspool haava. Selle meetodi puudused hõlmavad verejooksu jätkumist väljendunud kollateraalse vereringe juuresolekul, samuti jäseme nekroos halva arengu korral.

Hemostaatilise klambriga kinni võetud veresoone väänamine põhjustab veresoone otsa muljumise ja selle sisekesta keerdumise, mis sulgeb veresoone valendiku ja hõlbustab verehüübe teket. Seda meetodit saab kasutada ainult siis, kui väikese kaliibriga anumad on kahjustatud.

Haavatamponaadi saab kasutada kapillaaride ja parenhüümi verejooksude peatamiseks. Selleks sisestatakse haavale marli tampoonid, mis suruvad kahjustatud anumad kokku.

Viimastel aastatel on kopsu- ja kaksteistsõrmiksoole hemorraagia peatamiseks välja töötatud ja kasutusele võetud veresoonte kunstliku kehastamise meetodid, kui röntgenkontrolli all sisestatakse veritsussoonesse kateeter ja selle kaudu sisestatakse emboolid, sulgedes selle valendiku; Emboliseerimise kohas moodustub seejärel tromb.

Verejooksu lõplikuks peatamiseks on ideaalsed meetodid veresoonte õmbluse paigaldamine, samuti arterite ja veenide auto- ja alloplastika. mis võimaldab mitte ainult peatada verejooksu, vaid ka taastada normaalse vereringe piki kahjustatud kanalit. Kirjeldatud on üle 70 veresoonte ühenduste modifikatsiooni, kuid rekonstrueerivate operatsioonide heade tulemuste saamiseks pole võtmetähtsusega mitte niivõrd veresoonte õmbluse tüüp. kui palju on selle rakendamise kvaliteet (Novikov Yu.V. et al., 1984).

Selle meetodi peamised põhimõtted on:

1) tugevus,

2) tihedus,

3) veresoone ühe osa intiima kohustuslik võrdlemine teise osa intimaga,

4) veresoone valendikus ei tohiks olla õmblusmaterjali,

5) õmblus peaks minimaalselt ahendama veresoone valendikku.

Seal on ringikujulised ja külgmised vaskulaarsed õmblused. Vaskulaarse õmbluse käsitsi paigaldamiseks kasutatakse atraumaatilisi nõelu: praegu kasutatakse veresoonte õmblusseadmeid veresoonte ringikujuliseks õmbluseks, samas kui mehaaniline õmblus on üsna täiuslik ja nakkuskindel. Märkimisväärse veresoone otste vahelise diastaasi korral, oluline pinge, mis tekib kahjustatud veresoone otste kokkuviimisel, veresoonte defektide korral, eriti suurenenud füsioloogilise stressiga piirkondades (popliteaal-, kubeme-, küünarnukipiirkonnad), soovitavam on kasutada arterite ja veenide plastilist kirurgiat (Novikov Yu.V. koos al., 1984). Parim materjal veresoonte rekonstrueerimiseks peaks olema ohvri enda veen (reie suur õõnsusveen või õla õõnsusveen). Siirdamise saamiseks ei saa kasutada kahjustatud jäseme veene võimaliku venoosse puudulikkuse tekke ohu ja süvaveenide tromboosi suurenenud riski tõttu. Paljutõotav meetod peamise verevoolu taastamiseks on autoarteriaalsete transplantaatide kasutamine. Sünteetilistest materjalidest veresoonte proteeside kasutamisel suureneb mädaste tüsistuste tekkerisk. Veresoonte taastavaid operatsioone tohivad teha ainult spetsiaalse väljaõppe saanud kirurgid (angiokirurgid) spetsiaalsete instrumentide, optiliste seadmete ja õmblusmaterjaliga.

Füüsikalised meetodid.

Verejooksu peatamise termilisi meetodeid kasutasid Egiptuse, Kreeka ja Rooma impeeriumi iidsed arstid, veritsev haava kuuma raua ja keeva õliga. Need meetodid põhinevad madalatel temperatuuridel, mis põhjustavad vasospasmi, ja kõrgetel temperatuuridel valke hüübivad ja kiirendavad vere hüübimist. Kohaliku kudede hüpotermia korral verejooksu piirkonnas kasutatakse tavaliselt jää, lume või külma veega täidetud meditsiinilist põit. Mao lokaalset hüpotermiat jahutatud veega temperatuurini +4°, +6°C kasutatakse laialdaselt ägeda gastroduodenaalse verejooksu ravimeetmete kompleksis. Peamine termiline meetod verejooksu peatamiseks on diatermokoagulatsioon, mis põhineb kõrgsageduslike vahelduvvoolude kasutamisel. Seda meetodit kasutatakse laialdaselt operatsiooni ajal verejooksu peatamiseks nahaaluse rasvkoe ja lihaste kahjustatud veresoontest, aju väikestest veresoontest, samuti gastroduodenaalse verejooksu endoskoopiliseks kontrolliks. Kapillaaride või parenhüümi verejooksu peatamiseks kasutatakse haava loputamist kuuma isotoonilise naatriumkloriidi lahusega.

Keemilised meetodid.

Nende hulka kuuluvad vasokonstriktorite ja vere hüübimist soodustavate ravimite kasutamine. Vasokonstriktorite hulka kuuluvad adrenaliin (1:1000), mida kasutatakse paikselt limaskestade verejooksu korral, samuti tungaltera ekstrakt (emakasarved), mida kasutatakse emakaverejooksu korral. Vesinikperoksiidil, mida kasutatakse 3% lahuse kujul, on hemostaatiline toime. Kui sisestada 3% lahuses leotatud tampoon, laguneb H0 aatomhapnikuks ja veeks. Oksüdatsiooni tulemusena suureneb vere hüübivus ja moodustub tromb. Sellesse rühma kuulub alumiinium-kaaliummaarjas, mida "hemostaatiliste pliiatsite" kujul kasutatakse marrastuste ja väikeste haavade raviks. Vere hüübimist suurendavate ainete hulgas kasutatakse laialdaselt kaltsiumkloriidi, mida manustatakse intravenoosselt 10 ml 10% lahuses. Selle hemostaatiline toime ei seisne mitte ainult koagulatsiooni stimuleerimises, vaid ka hemostaasi vaskulaarse komponendi mõjutamises, vähendades veresoonte seina läbilaskvust ja tõstes perifeersete veresoonte toonust.

Bioloogilised meetodid.

Verejooksu peatamiseks kasutatavatel bioloogilistel ainetel on resorptiivne ja lokaalne toime. Üldise resorptiivse toimega hemostaatiliste ainete hulka kuuluvad värskelt konserveeritud veri ja selle preparaadid (plasma, krüopretsipitaat, fibrinogeen jne), bioloogilised (trasülool, kontrikaal) ja sünteetilised (aminokaproonhape) antifibrinolüütilised ravimid, K-vitamiin (vikasool) ja C-vitamiin (askorbiinhape). ) . Laialdaselt kasutatakse kohalikke hemostaatilisi ravimeid, millel on paikselt haavale manustamisel verejooksu peatamine. Nende hulka kuuluvad trombiin, hemostaatiline ja želatiinkäsn, fibriinikile, bioloogiline antiseptiline tampoon jne. Ainulaadne bioloogiline tampoon on lihaskoe, suurem omentum vaba klapi või jalalaba kujul, fastsia, mis on rikas trombokinaasi poolest ja mida kasutatakse peatamiseks. verejooks parenhüümi organist.

Hemostaasi toime tugevdamiseks kombineeritakse sageli erinevaid verejooksu peatamise meetodeid.

Žguti pealekandmine.

Tavaline žgutt on kummipael 1,5 m pikk keti ja konksuga otstes

Näidustused: Meetodit kasutatakse tavaliselt jäsemete haavade veritsuse korral, kuigi on võimalik panna žguti kubemesse ja kaenlaalusesse piirkonda, samuti kaelale (vigastamata poolel olev neurovaskulaarne kimp on kaitstud Krameri lahasega ).

Peamised näpunäited žguti pealekandmiseks on järgmised:

Arteriaalne verejooks jäsemete haavadest;

Igasugune ulatuslik verejooks jäsemete haavadest.

Selle meetodi eripära on žgutist distaalse verevoolu täielik lõpetamine. See tagab usaldusväärse verejooksu kontrolli, kuid põhjustab samal ajal märkimisväärset koeisheemiat. Lisaks saab žgutt kokku suruda närve ja muid moodustisi.

Žguti paigaldamise üldreeglid:

· Enne žguti paigaldamist tuleb jäseme tõsta.

· Žgutt kantakse haavale proksimaalselt ja võimalikult lähedale.

· Žguti alla on vaja asetada kangas (riided).

· Žguti pealekandmisel tehke 2-3 ringi, venitades seda ühtlaselt ja ringid ei tohiks olla üksteise peal.

· Peale žguti paigaldamist märgi kindlasti ära selle täpne pealekandmise aeg (tavaliselt pannakse žguti alla vastava märkega paber).

· Kehaosa, kuhu žgutt paigaldatakse, peab olema kontrollimiseks juurdepääsetav.

Esmalt transporditakse ja ravitakse žgutiga ohvreid. Õigesti rakendatud žguti kriteeriumid on järgmised:

Peatage verejooks;

Perifeerse pulsatsiooni lõpetamine;

Kahvatu ja külm jäse.

On äärmiselt oluline, et žguti ei saaks hoida alajäsemetel üle 2 tunni ja ülemistel jäsemetel üle 1,5 tunni. Vastasel juhul võib pikaajalise isheemia tõttu tekkida jäsemele nekroos.

Kui kannatanut on vaja pikka aega transportida, vabastatakse žgutt iga tunni järel umbes 10-15 minutiks, asendades selle meetodi teise ajutise verejooksu peatamise meetodiga (sõrmesurve).

Žgutt tuleb eemaldada järk-järgult, lõdvestades, eelnevalt valuvaigistite manustamisega.

Arterite sõrmede surve.

See on üsna lihtne meetod, mis ei nõua lisaseadmeid. Selle peamine eelis on võime täita nii kiiresti kui võimalik. Puuduseks - seda saab tõhusalt kasutada ainult 10-15 minutit, see tähendab, et see on lühiajaline.

Näidustused: Arterite digitaalse rõhu näidustuseks on massiline verejooks vastavast arteriaalsest basseinist.

Sõrmede surve on eriti oluline hädaolukordades, et valmistuda mõne muu hemostaasi meetodi kasutamiseks, näiteks žguti paigaldamiseks.

Veritseva anuma vajutamine haavas.

Kirurgid kasutavad seda tehnikat sageli, kui operatsiooni ajal tekib verejooks. Veresoone kahjustuskoht või veresoone proksimaalselt surutakse kokku ühe või mitme sõrmega. Verejooks peatatakse, haav kuivatatakse ja valitakse kõige adekvaatsem lõplik verejooksu peatamise meetod.

Maksimaalne jäseme painutus.

Meetod on efektiivne verejooksude korral reiest (maksimaalne paindumine puusaliigeses), jalast ja labajalast (maksimaalne painutus põlveliigeses), käest ja küünarvarrest (maksimaalne paindumine küünarliigeses)

Näidustused maksimaalse painde sooritamiseks on samad, mis žguti paigaldamisel. Meetod on vähem usaldusväärne, kuid samal ajal vähem traumaatiline. Küünarliigese maksimaalset paindumist kasutatakse sageli verejooksu peatamiseks pärast kubitaalveeni punktsiooni (intravenoossed infusioonid, vereproovide võtmine uuringuteks).

Jäseme kõrgendatud asend.

Meetod on äärmiselt lihtne - peate lihtsalt vigastatud jäseme tõstma.

Näidustused: venoosne või kapillaarverejooks, eriti alajäsemete haavadest.

Surveside.

Näidustused: Survesidemeid kasutatakse väikeste veresoonte mõõduka verejooksu, veeni- või kapillaarverejooksu korral. See meetod on valikmeetod alajäsemete veenilaiendite verejooksu korral. Varasel operatsioonijärgsel perioodil (pärast flebektoomiat, piimanäärme sektoraalset resektsiooni, mastektoomiat jm) võib verejooksu vältimiseks haavale panna surveside.

Selle lihtsa meetodi kasutamiseks vajate ainult sidet ja sidemematerjali.

Tehnika: kanna haavale mitu steriilset salvrätikut (vahel moodustub peale rull) ja sideme tihedalt kinni. Enne sideme paigaldamist jäsemele on vaja anda sellele kõrgendatud asend. Side tuleks kanda perifeeriast keskele.

Haava tamponaad.

Meetod on näidustatud mõõduka verejooksu korral väikestest veresoontest, kapillaaride ja venoossete verejooksude korral haavaõõne juuresolekul. Sageli kasutatakse operatsioonides. Haavaõõs täidetakse tihedalt tampooniga, mis jäetakse mõneks ajaks seisma. Verejooks peatatakse, võidetakse aega ja seejärel kasutatakse adekvaatsemat meetodit.

Klambri paigaldamine veritsevale anumale.

Meetod on näidustatud verejooksu peatamiseks operatsiooni ajal. Verejooksu korral rakendab kirurg verejooksule spetsiaalse hemostaatilise klambri (Billrothi klamber). Verejooks peatub. Seejärel kasutatakse viimast meetodit, kõige sagedamini anuma ligeerimist. Klambri paigaldamisel peate meeles pidama, et seda tuleb teha äärmiselt ettevaatlikult, visuaalse kontrolli all, vastasel juhul võib lisaks kahjustatud veresoonele või närv klambrisse sattuda ka suur veresoon või närv, mis toob kaasa ebasoodsaid tagajärgi.

Ajutine ümbersõit.

Seda kasutatakse suurte peamiste veresoonte, peamiselt arterite kahjustamiseks, mille kaudu verevoolu peatumine võib põhjustada soovimatuid tagajärgi ja isegi ohustada patsiendi elu.

Kirurg võib veresoone kahjustatud otstesse sisestada toru (polüetüleen, klaas) ja kinnitada selle kahe ligatuuriga. Jäsemes on vereringe säilinud, verejooks puudub. Sellised ajutised šundid toimivad mitu tundi või isegi mitu päeva, mis võimaldab seejärel paigaldada vaskulaarse õmbluse või asendada anuma.

Meetodid verejooksu lõplikuks peatamiseks.

Verejooksu lõpliku peatamise meetodid, olenevalt kasutatud meetodite iseloomust, jagunevad mehaanilisteks, füüsikalisteks (termilisteks) ja keemilisteks.

Mehaanilised meetodid.

Laeva ligeerimine.

Veresoonte ligeerimist on kahte tüüpi:

veresoone ligeerimine haavas;

Laeva ligeerimine kogu ulatuses.

Anuma ligeerimine haavas.

Kindlasti on eelistatav anuma sidumine haavas otse vigastuskohas. See verejooksu peatamise meetod häirib minimaalse hulga kudede verevarustust.

Laeva ligeerimine kogu ulatuses

Anuma ligeerimiseks piki selle pikkust on kaks näidust.

Tehnika viiakse läbi vastavalt topograafilistele ja anatoomilistele andmetele: veresoon paljastatakse ja ligeeritakse piki kahjustustsooni proksimaalset pikkust.

Laeva õmblemine.

Juhtudel, kui veritsussoon ei ulatu haava pinnast kõrgemale ja seda ei ole võimalik klambriga haarata, asetatakse veresoone ümber rahakott või rahakott.Z-kujuline õmblus läbi ümbritsevate kudede, millele järgneb niidi pingutamine - veresoone nn õmblemine

Veresoonte keerdumine, muljumine.

Haavatamponaad, surveside.

Vaskulaarne emboliseerimine.

Meetod on vähetraumaatiline ja võimaldab vältida suuremaid kirurgilisi sekkumisi, kuid selle näidustused on piiratud. Lisaks on vaja erivarustust ja kvalifitseeritud töötajaid.

Spetsiaalsed meetodid verejooksu vastu võitlemiseks.

Vaskulaarne õmblus ja veresoonte rekonstrueerimine.

Seda kasutatakse suurte põhiveresoonte kahjustamiseks, mille kaudu verevoolu seiskumine tooks kaasa kahjulikud tagajärjed patsiendi elule. Seal on käsitsi ja mehaanilised õmblused.

Manuaalse õmbluse pealekandmisel kasutatakse atraumaatilist mitteimenduvat õmblusmaterjali (keermed nr 4/0-7/0 olenevalt anuma kaliibrist).

Kõrge tihedusaste;

Puuduvad verevoolu häired (konstriktsioonid ja turbulents);

Anuma luumenis võimalikult vähe õmblusmaterjali;

Veresoonte seinte kihtide täpne sobitamine.

Tuleb märkida, et ainult selle meetodiga säilib kudede verevarustus täielikult.

Füüsikalised meetodid.

Neid kasutatakse ainult väikeste veresoonte, parenhüümi ja kapillaaride verejooksu korral, kuna verejooksu keskmisest või suurest veenist ja eriti arterist saab peatada ainult mehaaniliselt.

Füüsikalisi meetodeid nimetatakse muidu termiliseks, kuna need põhinevad madala või kõrge temperatuuri kasutamisel.

Kokkupuude madala temperatuuriga.

Hüpotermia hemostaatilise toime mehhanismiks on veresoonte spasmid, verevoolu aeglustumine ja veresoonte tromboos.

Kohalik hüpotermia.

Maoverejooksu korral on võimalik sondi kaudu makku viia ka külmi (+4°C) lahuseid (tavaliselt kasutatakse keemilisi ja bioloogilisi hemostaatilisi aineid).

Krüokirurgia.

Krüokirurgia on kirurgia erivaldkond. Siin kasutatakse väga madalaid temperatuure. Lokaalset külmutamist kasutatakse aju-, maksaoperatsioonidel ja vaskulaarsete kasvajate ravis.

Kokkupuude kõrge temperatuuriga.

Kõrge temperatuuri hemostaatilise toime mehhanism on veresoone seina valgu koagulatsioon, vere hüübimise kiirendamine.

Kuumade lahuste kasutamine

Diatermokoagulatsioon.

Meetodit saab kasutada verejooksu korral siseorganitest (mao limaskesta veritseva veresoone koagulatsioon läbi fibrogastroskoopi) jne. Elektrokoagulatsiooni saab kasutada ka kudede eraldamiseks koos samaaegse väikeste veresoonte koagulatsiooniga (“elektrooniline nuga” instrument), mis hõlbustab oluliselt mitmeid operatsioone, kuna sisselõikega ei kaasne sisuliselt verejooksu.

Antiblastilistel kaalutlustel kasutatakse elektrilist nuga onkoloogilises praktikas laialdaselt.

Laserfotokoagulatsioon, plasma skalpell.

Keemilised meetodid.

Kasutusmeetodi järgi jagunevad kõik keemilised meetodid kohalikeks ja üldisteks (või resorptiivseteks).

Kohalikud hemostaatilised ained.

Kohalikke hemostaatilisi aineid kasutatakse verejooksu peatamiseks haavas, maos ja muudel limaskestadel.

Vesinikperoksiidi. Kasutatakse haava verejooksu korral, see toimib trombi moodustumist kiirendades.

Vasokonstriktorid (adrenaliin). Kasutatakse verejooksu vältimiseks hamba väljatõmbamisel, süstitakse maoverejooksu ajal limaskestaalusesse kihti jne.

Fibrinolüüsi inhibiitorid - ε-aminokaproonhape. Süstitakse makku maoverejooksu korral.

Vaha. Kasutatakse selle tamponeerivat toimet. Kolju kahjustatud lamedad luud suletakse vahaga (eriti kraniotoomia operatsiooni ajal).

Kaprofer. Kasutatakse mao limaskesta niisutamiseks ägedate haavandite erosioonide verejooksu ajal (endoskoopia ajal).

Resorptiivse toimega hemostaatilised ained

Patsiendi kehasse viiakse resorptiivse toimega hemostaatilised ained, mis kiirendavad kahjustatud veresoonte tromboosi protsessi.

· Fibrinolüüsi inhibiitorid (ε-aminokaproonhape).

· Kaltsiumkloriid – kasutatakse hüpokaltseemia korral ioonidena

· Kaltsium on üks vere hüübimissüsteemi tegureid.

· Ained, mis kiirendavad tromboplastiini moodustumist - ditsinoon, etamsülaat (lisaks normaliseerivad veresoone seina läbilaskvust ja mikrotsirkulatsiooni).